(19)国家知识产权局
(12)发明 专利申请
(10)申请公布号
(43)申请公布日
(21)申请 号 202211000218.8
(22)申请日 2022.08.19
(71)申请人 杭州迅灵生物科技有限公司
地址 310000 浙江省杭州市滨江区长河街
道滨安路68 8号2幢E楼三层3 05室
(72)发明人 金霞 胡彬 杨钦 黄文莺
雷小红 董迎迎
(51)Int.Cl.
C12Q 1/689(2018.01)
C12Q 1/6844(2018.01)
C12N 15/11(2006.01)
C12R 1/35(2006.01)
(54)发明名称
一种支原体LAMP荧光检测引物组合物及其
LAMP荧光检测法
(57)摘要
本发明涉及支原 体LAMP检测技术领域, 尤其
涉及一种支原体LAMP荧光检测引物组合物及其
LAMP荧光检测法, 其中一种支原 体LAMP荧光检测
引物组合物, 由正向内引物FIP、 反向内引物BIP、
正向外引物F3、 反向外引物B3与探针LF、 LF 1、 LF‑
Q组成, 本发明大大提升LAMP检测猫杯状病毒的
特异性, 减少假阳; 可以进行多重LAMP反应; 荧光
和胶体金可以同时检测, 从而节约成本和时间;
基于荧光检测, 提升 灵敏度。
权利要求书1页 说明书4页 附图1页
CN 115386646 A
2022.11.25
CN 115386646 A
1.一种支原体LAMP荧光检测引物组合物, 其特征在于, 由正向内引物FIP、 反向内引物
BIP、 正向外引物F3、 反向外引物B3与探针LF、 LF1、 LF ‑Q组成; 各引物序列具体如下:
F3 5’ ‑CTCAAATGGATGGTGCTATC ‑3’;
B3 5’ ‑TGGAGCATTATCTCCATCAA‑3’;
FIP 5’ ‑CGAGGAACACCAACTTGTCTAGATA ‑TTAGTTGTTGCTGCAACAGA‑3’;
BIP 5’ ‑bio AAGGTGAAGAAGAGATGAT TGAACT‑TCCGTATTCTGAAAGAAGTGAA‑3’;
LF: 5’ ‑AAAGAATGTGTTCACGTGT TTGA‑3’;
LF1: 5’ ‑(FAM) GTCAGTGCAGGCTCCCGTAAAGAATGTGTTCACGTGTTTGA (THF) GCATTGGTCCA ‑
3’ (C3‑SPACER) ;
LF‑Q: 5’ ‑ACGGGAGCCTGCACTGAC ‑3’(BHQ1) 。
2.根据权利要求1所述的一种支原体LAMP荧光检测引物 组合物, 其特征在于, 所述探针
LF1与LF‑Q替换为LF’, 其中LF’的序列为:
LF’ 5’ ‑(BHQ1) ATTGCGGGAGATGAGACCCGCAA (FAM ‑dT) AAAGAATGTGTTCACGTGTTTGA (THF)
GCATTGGTCCA‑3’ (C3‑SPACER) 。
3.根据权利要求1或2所述的一种支原体LAMP荧光检测引物组合物, 其特征在于: 所述
反向内引物BIP设有生物 锁。
4.一种支原体LAMP荧光检测法, 其特征在于, 采用权利要求3所述的支原体LAMP荧光检
测组合物, 具体 检测方法如下:
12.5ul 2×buffer (1.6M甜菜碱, 40 mM Tris‑HCl (pH 8.8), 20 mM KCl, 20 mM
(NH4)2SO4, 4pmol LF, 16pmol LF1和16pmol的LB ‑Q 1ul Bst 2.0 DNA polymerase, 8.4
mM MgSO4, 1.2 uM dNTPs , 1ul Endo IV , 加入模板2ul, 其 余加水补充至25ul;
放置在博日荧光定量PCR仪器中, 40cycles 60℃ 60s 读取FAM荧光, 反应结束后取
10ul的产物加入190ul的水中, 振荡混匀, 滴管 取约60ul液体加入核酸试纸条中, 5mi n观察。
5.根据权利要求4所述的一种 支原体LAMP荧光检测法, 其特征在于: 将所述16pmol LF1
和16pmol的LB‑Q替换为16pmo l LF’。权 利 要 求 书 1/1 页
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2一种支原体LAMP荧光检测引物组合物及其LAMP荧光检测法
技术领域
[0001]本发明涉及支原体LAMP检测技术领域, 尤其涉及一种支原体LAMP 荧光检测引物组
合物及其 LAMP荧光检测法。
背景技术
[0002]自1980年PC R技术发明后, 基于PC R技术的核酸检测迅速应用到临床、 食品、 环境的
检测中, 并成为核酸检测的金标准。 但P CR的检测技术存在设备体积大、 粗样品耐受性差、 反
应时间长、 灵敏度难以达到单copy等诸多缺点, 已经难以满足现代核酸检测的要求: 速度快
(<30min) 、 超灵敏度 (1 ‑5copy/test) 、 大体积粗制样品直检 (20 ‑50%反应体积样本量) 、 野外
操作、 简单化操作等方面的指标。 在过去的20年中科学家 一直尝试通过恒温扩增的方法来
实现上述 目标, 这其中包括RCA(rolling circle amplification)、 LAMP(loop ‑mediated
isothermal amplification)、 RPA(recombinase polymerase amplification)、 NASBA
(nucleic acid sequence based amplification)、 SDA(strand displacement
amplification)、 HDA (helicase dependent amplification)、 TMA(transcription ‑
mediated amplification)等新型核酸恒温扩增技 术。
[0003]在这些恒温扩增技术中, 以2000年首次报道的LAMP法尤为耀眼和引人关注, 目前
占据超过60%的恒温检测市场。 核酸检测对LAMP技术如此亲赖, 究其原因, 得益于其它恒温
检测技术难以达 到LAMP技 术的综合 性优势:
1、 反应速度极快, 优化的引物组合可以达到 15min内检测到单copy分子, 检测速度
接近或超过RPA和NASBA;
能够达到超敏检测极限, 1 ‑5copy的分子能够稳定检出, 稳定性极高, 其它任何恒
温技术难以达 到如此稳定的水平;
2、 结果判读形式的多样化, 适应各种环境和条件下的核酸快速检测。 LAMP扩增作
为终点判读形式, 可不借助任何其它辅助设备, 裸眼观察检出结果。 基于钙黄绿素、 HNB、 红
黄变色、 OG橙绿变 色都可以肉 眼观察结果。 LAMP同样可借助浊度仪进行实时浊度分析。 在反
应体系中加入SYBR Green荧光染料后, 可使用小型恒温荧光仪进行实时检测 。 以上这些结
果判读形式均可在 野外等非标准实验室进 行, 所需设备简单、 小巧、 价格低廉、 便于普及。 除
此外, 传统实验室中的荧光定量PCR仪, 同样可进行LAMP检测, 可采用SYBR Green、 MB探针 法
或LAMP TaqMan探针法, 对于经常操作PCR检测的人员来讲, 可以无 缝对接、 无需更 换设备。
[0004]3、 对RNA病毒的漏检率低, 由于RNA病毒的突变率较高, 在PCR检测中个别突变对
PCR的扩增影响较大, 容易造成病毒漏检的假阴性。 而LAMP识别靶基因8个区段, 在这些识别
区段中个别的突变对LAMP扩增影响较小, 不 易产生漏检。
[0005]4、 试剂稳定、 易于使用。 同RPA、 NASBA等技术相比, LAMP与PCR法都采用单一酶 (或
双酶) 系统进 行反应, 生产批次稳定、 反应酶系统耐 高温, 试剂稳定性好。 在检测试剂中仅包
含酶mix一管、 引物/探针一管, 使用方便, 在荧光定量P CR机器上可方便的进 行高通量检测。
而RPA、 NASBA 等系统需要多个复合 酶, 比例严谨、 试剂稳定生产困难、 保存运输条件苛刻、 难说 明 书 1/4 页
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专利 一种支原体LAMP荧光检测引物组合物及其LAMP荧光检测法
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